• ASO的作用体制
传统的基于反义寡核苷酸(ASO)的基因调控(包括基因表达的沉默或提高基因表达)以 mRNA 为目标,可以在细胞核或细胞质中发生作用。在细胞核中(靶向pre-mRNA前体),调控通常通过改变多聚腺苷酸化作用 、改变剪接事件或切割核苷酸间键来起作用,所有这些都发生在 mRNA 成熟过程中(图1)。在细胞质中(靶向成熟 mRNA),调控通常通过翻译调控或招募RNaseH切割起作用(图 2)
图1. 细胞核中基于反义寡核苷酸的基因调控机制
图2. 细胞质中基于反义寡核苷酸的基因调控机制
反义寡核苷酸通过碱基配对识别并与目标mRNA杂交。导致目标mRNA被RNase H无论是在细胞核还是细胞质中。切割的反义寡核苷酸在研究和治疗目的方面得到了广泛研究,因此在调控机制方面也研究的相对透彻。RNase H使用镁离子作为辅助因子,通过水解核苷酸间(磷酸二酯)键来切割 mRNA:DNA 异源双链中的 mRNA 链。
• ASO设计考虑因素
原则上,基因沉默应该像在目标mRNA 中选择一个序列、采购互补的通过碱基配对的反义寡核苷酸、将其引入所研究的系统(无论是在体外还是体内),然后后续的分子生物学检测ASO作用效果。然而,设计反义寡核苷酸需要考虑许多因素。
杂交位点
根据碱基配对规则,反义寡核苷酸应该与目标mRNA序列的任何区域杂交。但是,mRNA会折叠成二级甚至三级结构,这可能会阻止反义寡核苷酸杂交。因此,应选择mRNA的非折叠区域作为杂交位点。有一些湿实验室方法,如RNase H定位,可用于预测可接近的位点,也可以通过预测 RNA二级结构做初步判断。
细菌DNA中未甲基化的 CpG二核苷酸的频率比脊椎动物DNA高得多。这主要是因为CpG二核苷酸在脊椎动物基因组中代表性不足,并且其中80%被甲基化标记。由于细菌中的CpG基序会触发 B细胞、自然杀伤细胞、单核细胞和细胞因子的活化,而脊椎动物的CpG基序则不会,这可能是免疫系统识别细菌感染的方式之一。含有未甲基化 CpG基序的反义寡核苷酸以与细菌 DNA 类似的方式刺激免疫系统,并且可能是早期反义研究中一些报道的效应的原因。
为了避免免疫刺激,如果可能的话,设计不含 CpG 基序的反义寡核苷酸,或者至少不含以下产生最强免疫反应的扩展基序。
最佳长度通常为12到28个碱基。短于12个碱基的序列会增加脱靶杂交的概率,而长于25个碱基的序列会导致细胞吸收率降低。
应检查反义寡核苷酸的二级结构和寡核苷酸二聚体的形成,因为这两者都可能干扰与靶位点序列的杂交。如果可能,设计反义寡核苷酸使其具有尽可能弱的二级结构且不形成二聚体。
如上所述,确定目标mRNA 中没有折叠的位点以及确保反义寡核苷酸没有自身互补性至关重要。然而,仅这些考虑因素不足以确保适当的杂交。各种因素,例如硫代磷酸酯会降低反义寡核苷酸对靶位点的结合亲和力,这反过来又会使减弱敲低效率。已发现第三代反义寡核苷酸修饰不仅具有抗核酸酶的特性,还能提高结合亲和力。
最终的未修饰反义寡核苷酸序列应进行 BLAST 搜索,以确保任何脱靶杂交(最好没有)不会干扰反义活性或导致不可接受的毒性。
• 质量考虑因素
原则上,基因沉默应该像在目标mRNA 中选择一个序列、采购互补的通过碱基配对的反义寡核苷酸、将其引入所研究的系统(无论是在体外还是体内),然后后续的分子生物学检测ASO作用效果。然而,设计反义寡核苷酸需要考虑许多因素。对于体内动物实验,我们建议反义寡核苷酸进行体内级纯化,包括离子交换、内毒素检测(确保热原低于可接受的上限)和过滤(将污染的菌落形成单位数量减少到可接受的上限以下)。